腺病毒疫苗促進腫瘤新生抗原特異性CD8+ T細胞的干細胞特性和腫瘤排斥反應

文獻鏈接:Adenoviral-based vaccine promotes neoantigen-specific CD8+ T cell stemness and tumor rejection
發(fā)表期刊:SCIENCE TRANSLATIONAL MEDICINE
影響因子:19
發(fā)表時間:2022年8月
單細胞轉(zhuǎn)錄組測序用于 臨床前/I期--藥效評估與安全性機制研究
該臨床試驗已經(jīng)推進到I/II期,招募微衛(wèi)星不穩(wěn)定的實體瘤患者:Nous-209 Genetic Vaccine for the Treatment of Microsatellite Unstable Solid Tumors

1. GAd疫苗設(shè)計和新表位穩(wěn)定性驗證

作者選擇了7個預測的免疫原性新表位(來自小鼠MC38結(jié)直腸腺癌細胞系的腫瘤特異性點突變:Cpne1、Irgq、Aatf、Reps1、Med12、Dpagt1、Adpgk)生成一種針對腫瘤特異性新抗原的Ad疫苗(圖1A)

與相應的野生型肽相比,這些肽對主要組織相容性復合體I類(MHC-I)具有最高的結(jié)合親和力,穩(wěn)定性測試顯示:Reps1的穩(wěn)定性最高,其次是Cpne1和Adpgk(圖1 B-D)

圖1.GAd疫苗設(shè)計和穩(wěn)定性驗證;圖A. 腺病毒載體設(shè)計圖:7個新表位頭到尾連接,生成一個合成的抗原分子;圖B-D. 免疫原性肽的穩(wěn)定性測試:在RMA-S細胞系中裝載新抗原多肽后,通過與MHC-I分子組合在細胞表面表達,然后通過流式細胞術(shù)在不同時間段定量

2. 小鼠模型評估評估GAd疫苗和PD-1聯(lián)合使用有效性

試驗設(shè)計1:設(shè)置3組注射MC38結(jié)腸腺癌細胞系的C57BL/6J雌性小鼠(G1-G3),從第11天開始G2和G3組小鼠每3天注射一次單克隆抗體PD-1(第11天腫瘤大小在70-100立方毫米),G3組同時在第11天注射多種新抗原GAd疫苗,在腫瘤植入第26天,通過流式細胞術(shù)分析引流淋巴結(jié)、腫瘤和脾臟中的Adpgk+和Reps1+的CD8+ T細胞(圖2A)

2.1 GAd治療擴大腫瘤中的新抗原特異性CD8+ T細胞

兩個新表位(Adpgk和Reps1),在穩(wěn)定性、預測的結(jié)合親和力和體內(nèi)免疫原性方面具有非常相似的特征,具有不同的浸潤腫瘤的能力:

  • 生存率分析:與PD-1單藥治療相比,接受GAd和αPD-1聯(lián)合治療的小鼠的抗腫瘤控制增強,總生存率增加(圖2B)
  • Reps1+ T細胞:Reps1是一種在腫瘤排斥反應中效率較低的新表位,在未治療的對照組荷瘤小鼠中,Db -Reps1+ CD8+ T細胞的頻率非常低(圖2 C),但僅在脾臟中Db -Reps1+ CD8+ T細胞的頻率和數(shù)量均顯著增強(圖2I),引流淋巴結(jié)和腫瘤組織中沒有顯著差異(圖2 E,G)
  • Adpgk+ T細胞:Adpgk是之前研究發(fā)現(xiàn)在腫瘤組織浸潤T細胞擴增較明顯的表位,GAd +αPD-1處理的荷瘤小鼠引流淋巴結(jié)、腫瘤和脾臟中Db -Adpgk+ CD8+ T細胞的頻率增加(圖2 D,F,H),同時在GAd免疫聯(lián)合αPD-1抗體治療的小鼠與單獨接受αPD-1治療的小鼠相比,腫瘤和脾臟中Db -Adpgk+ CD8+ T細胞的數(shù)量分別為單獨治療的100倍和10倍。
    圖2. GAd疫苗聯(lián)合PD-1治療通過增加小鼠腫瘤新抗原反應性CD8+ T細胞的數(shù)量來控制腫瘤生長;圖A. 試驗設(shè)計;圖B. G1-G3中荷瘤小鼠的總生存率;圖C. G1-G3中荷瘤小鼠的腫瘤新抗原特異性T細胞的流式分析圖;圖D-I. Adpgk和Reps1陽性CD8+ T細胞在引流淋巴結(jié)、腫瘤和脾臟中的百分比
2.2 GAd治療增加了新表位特異性記憶前體和效應體的頻率(流式分析)

GAd免疫聯(lián)合αPD-1免疫后,在荷瘤小鼠中,新抗原特異性CD8+ T細胞的免疫原性增強,分化和擴增的途徑不同。引流淋巴結(jié)和脾臟中有更多的記憶前體細胞,腫瘤中有效應T細胞:

CD127+ KLRG1?:記憶前體
CD127+ CD62L+ KLRG1?:中央記憶
CD127?KLRG1+:短暫效應
CD103+ CD69+ :組織常駐記憶
PD-1+ CD38+ :耗竭特性

  • 記憶前體T細胞:在引流淋巴結(jié)、腫瘤和脾臟中,用GAd處理的荷瘤小鼠中,檢測到CD127+KLRG1?記憶前體數(shù)量的增加(圖3 A-D;綠色標記)
  • 效應T細胞:CD127?KLRG1+Db-Adpgk-特異性CD8+ T細胞(效應體)也發(fā)現(xiàn)在引流淋巴結(jié)、腫瘤和脾臟顯著增加,尤其在腫瘤和脾臟組織中,是αPD-1單藥治療的10倍(圖3 A-D;藍色標記)
圖3. GAd聯(lián)合PD-1治療誘導小鼠新表位活性記憶前體CD8+ T細胞;圖A. CD127(記憶前體)和KLRG1(效應體)標記物的流式分析圖:綠框為記憶前體,藍框為效應體;圖B-D. 記憶前體和效應因子數(shù)量分析:綠色表示記憶前體,藍色表示效應體;
  • 耗竭T細胞:腫瘤組織中的記憶前體T細胞進一步分析“耗竭特性”,發(fā)現(xiàn)GAd處理的荷瘤小鼠中PD-1和CD38雙陽性細胞的頻率和數(shù)量增加(圖3 E),而引流淋巴結(jié)中的頻率和數(shù)量較低(圖3 E至H),尤其在下游淋巴結(jié)中低于αPD-1治療組(圖3F);在腫瘤組織Db-Adpgk+CD127?KLRG1+和CD127?KLRG1?CD8+的T細胞亞群(圖3I),GAd處理組大約58%和70%的細胞同時表達PD-1和CD38,但僅在CD127?KLRG1?CD8+ 亞群中檢出耗竭T細胞相對其他組顯著增加(圖3K)

  • 組織常駐記憶T細胞:CD103+ CD69+ TRM CD8+ T細胞的頻率在GAd處理組顯著增加(圖3 L,M)

圖3. GAd聯(lián)合PD-1治療誘導小鼠新表位活性記憶前體CD8+ T細胞;圖E. CD127+KLRG1?Db -Adpgk+ CD8+ T細胞的CD38和PD-1標記物分析;圖F-H. 在引流淋巴結(jié)(F)、腫瘤(G)和脾臟(H)中檢測CD127+ Db -Adpgk+ CD8+ T細胞門控的CD38+ PD-1+細胞的數(shù)量;圖I. 在腫瘤組織,門控CD127?KLRG1+(左)和門控CD127?KLRG1?(右)Db-ADpgk+CD8+T細胞上耗盡的CD38+ PD-1+細胞百分比;圖J. 檢測腫瘤中在門控CD127?KLRG1+上耗盡的Db -Adpgk+ CD8+ T細胞的數(shù)量;圖K. 檢測腫瘤中在門控CD127?KLRG1?上耗盡的Db -Adpgk+ CD8+ T細胞的數(shù)量;圖L. 腫瘤中CD103和CD69標記物(CD103+ CD69+ TRM組織駐留記憶T細胞)的細胞比例分析;圖M. 檢測腫瘤中Db -Adpgk+ CD8+ TRM細胞的數(shù)量

3. 小鼠模型--單細胞轉(zhuǎn)錄組測序數(shù)據(jù)分析匯總(scRNA-seq)

試驗設(shè)計2:3組小鼠(G1-G3)植入MC38腫瘤后第17天開始,G2和G3分別接受不同的藥物處理,并在第27天收集3組小鼠淋巴結(jié)和腫瘤組織,流式分選得到的CD8+Adpgk+細胞用于Smart-seq2測序;未作處理的小鼠作為對照標記為CTRL

單細胞測序質(zhì)控分析: CTRL組(9個重復)-157 cells;αPD-1組(5個重復)- 226cells;αPD-1+GAd組(8個重復)- 749cells,UMAP分出7個亞群(圖4B,C),每個亞群的marker表達如圖4E-G

3.1 GAd治療增加了新表位特異性干細胞樣和效應細胞積累(細胞組成分析)

聯(lián)合治療αPD-1+GAd促進了Db -Adpgk+ CD8+ T細胞在淋巴結(jié)中分化為TSTEM前體和腫瘤中的效應亞群(圖4H,I):

  • 聯(lián)合GAd處理組:淋巴結(jié)顯著富集干細胞樣祖細胞(cluster5-69%);腫瘤組織顯著富集耗竭T細胞(cluster4-44%)和效應T細胞(cluster3- 19%)
  • αPD-1處理組:淋巴結(jié)顯著富集早期激活T細胞(cluster6-64%)
  • 未治療組:淋巴結(jié)顯著富集幼稚T細胞(cluster2-55%)
圖4. CD8+ T細胞的scRNA-seq鑒定了由PD-1+GAd疫苗在小鼠中誘導的細胞亞群差異;圖A. scRNA-seq的實驗設(shè)計;圖B. CD8+ T的 UMAP可視化圖(t-腫瘤;ln-淋巴結(jié);dln-引流淋巴結(jié));圖C. 對圖B根據(jù)表型做注釋;圖D. 各實驗條件下Db -Adpgk+ CD8+ T細胞頻率的分布:不同顏色表示不同cluster;

圖4. CD8+ T細胞的scRNA-seq鑒定了由PD-1+GAd疫苗在小鼠中誘導的細胞亞群差異;圖E. 編碼轉(zhuǎn)錄因子、記憶性相關(guān)marker、效應性marker、免疫檢查點marker的基因表達量分析;圖F. 圖E中的marker基因表達量映射到UMAP細胞分群圖:顏色表示對應表達marker gene數(shù)量;圖G. 差異基因表達熱圖;圖H. 不同治療方法的細胞比例聚集式熱圖:橫軸表示圖C中不同cluster,縱軸表示不同治療方法和取樣部位;圖I. 以H圖為基礎(chǔ)僅顯示高占比亞群:圓圈大小表示細胞占比差異顯著性,顏色深淺表示差異倍數(shù)值
3.2 GAd治療改變T細胞分化軌跡并誘導CD8+干細胞樣前體生成(擬時序分析)

- 不同cluster特性分析: 幼稚T細胞cluster2 中TCF7+干細胞樣前體標簽基因顯著富集(記憶性,耗竭性,效應性功能反之);效應T細胞cluster3 中效應與記憶特征標簽基因顯著富集(耗竭性反之);耗竭T細胞cluster4 中顯著富集耗竭標簽基因;干細胞樣前體T細胞cluster5 顯著富集記憶性和效應性標簽基因;早期激活T細胞cluster6 表現(xiàn)出衰竭、記憶和效應特征的負富集;在記憶T細胞cluster7 TCF7+腫瘤浸潤、T細胞干性前體、循環(huán)記憶T細胞標簽相關(guān)基因顯著富集,而效應性標簽負富集(圖5 A,B)

圖5. 小鼠Db-Adpgk+ CD8+ T細胞的表型狀態(tài)和分化軌跡:圖A. 不同cluster差異表達基因的GSEA熱圖;圖B. 不同 gene signatures在各細胞亞群中表達百分比;

  • GAd聯(lián)合治療驅(qū)動T細胞向干細胞樣前體,記憶型,效應型T細胞軌跡分化:通過監(jiān)督軌跡分析出3個以幼稚T細胞cluster2為起始的不同分化軌跡(圖5 C),不同處理組在3條軌跡中的占比如圖5D,每條軌跡的marker表達如圖5E,GAd處理小鼠的Db -Adpgk+ CD8+ T細胞在軌跡2和軌跡3占比最高
    -- 軌跡1(360 cells):幼稚T細胞-->激活T細胞
    -- 軌跡2(548 cells):早期活性T細胞-->效應T細胞-->耗竭T細胞,伴隨效應和免疫檢查點抑制相關(guān)基因高表達
    -- 軌跡3(561 cells):記憶T細胞-->干細胞樣前體T細胞-->耗竭T細胞(記憶性和轉(zhuǎn)錄性marker瞬間高表達,免疫檢查點和效應性marker表達增加緩慢)
圖5. 小鼠Db-Adpgk+ CD8+ T細胞的表型狀態(tài)和分化軌跡:圖C. 擬時序軌跡分析;圖D.不同處理組小鼠細胞在對應擬軌跡的細胞占比;圖E. 轉(zhuǎn)錄因子、記憶、效應因子和檢查點標記基因沿著3條分化軌跡的表達狀態(tài)曲線:不同顏色的線條表示不同分化軌跡,橫軸表示從幼稚型T細胞到耗竭T細胞的分化時間
3.3 GAd聯(lián)合治療可誘導更廣泛的多功能CD8+ T克隆型(TCR-analysis)

總計檢出330個 unique clone 和 34個 擴增型 clone:

  • 擴增型clone占比沿分化軌跡增加:幼稚T細胞-->早期激活T細胞-->效應T細胞-->耗竭T細胞(不同cluster中的克隆多樣性分布如圖6B)
  • 不同處理組的TCR模式顯著不同: GAd疫苗處理小鼠的擴增型Db -Adpgk+ CD8+ T細胞克隆的數(shù)量最高(如圖6C)
  • 不同處理組的淋巴結(jié)和腫瘤TCR對比模式不同:αPD-1處理組中腫瘤和淋巴結(jié)共享克隆型比例高達86%,GAd聯(lián)合處理組共享比例65%(如圖6D,E),兩種組織中高頻率拷貝的共享TCR克隆型映射如圖6F
圖6. 小鼠淋巴結(jié)和腫瘤中記憶型干細胞樣祖細胞和耗竭細胞中TCR克隆型分析;圖A. TCR size映射到Db -Adpgk+ CD8+ T細胞UMAP分群圖中的不同cluster;圖B. 每個cluster中不同clone size的TCR分布餅圖;圖C. 不同實驗組中TCR克隆分布條形圖:舉例CTRL(51TCR單拷貝),舉例αPD-1+GAd,t(15種TCR多拷貝和71種TCR單拷貝,其條形圖中不同的顏色塊對應圖例中的克隆編號+細胞數(shù));圖D-E. 高頻拷貝TCR在腫瘤和淋巴結(jié)中的頻率分布散點圖;圖F. 不同TCR在UMAP分群圖的投影;
  • 多拷貝克隆型在不同處理組分布存在差異:αPD-1處理組小鼠中發(fā)現(xiàn)多拷貝TCR克隆主要富集在早期激活T細胞、耗竭型T細胞和干細胞樣T細胞前體中;GAd聯(lián)合治療組則主要富集在干細胞樣T細胞前體、效應T細胞和耗竭型T細胞;聯(lián)合治療使得效應T細胞群體(cluster3)TCR庫顯著擴大(圖6G)
  • GAd聯(lián)合治療組不同cluster的TCR多樣性差異: 在GAd聯(lián)合治療組中,干細胞樣T細胞前體(cluster 5)的TCR克隆頻率與其他cluster存在顯著差異(這與圖5C中GAd聯(lián)合治療組顯著在軌跡2和軌跡3富集的數(shù)據(jù)吻合)
    圖6. 小鼠淋巴結(jié)和腫瘤中記憶型干細胞樣祖細胞和耗竭細胞中TCR克隆型分析;圖G. 多拷貝TCR在各cluster中的分布頻率圖:3個不同的panel表示不同分組,橫軸表示不同cluster,縱軸表示對應TCR類別編號及拷貝數(shù),顏色表示橫軸所對應TCR在不同cluster中的比例(顏色越深;比例越高);圖H. αPD-1+GAd處理組小鼠的TCR細胞頻率在各cluster中的分布

4. 臨床I期實驗分析

試驗設(shè)計3:加入臨床試驗的患者首先接種GAd疫苗,隨后通過3次MVA疫苗增強(兩者都編碼209個移碼肽),整個過程中每3周接受一次αPD-1治療,在特定時間點采集外周血(PBMC)7次通過體外酶聯(lián)免疫吸附點(ELISpot)方法分析其對覆蓋所有209 FSPs編碼蛋白的16種肽pool的免疫原性,并針對不同的肽池分析患者的反應廣度,采集穿刺樣本2次進行RNA-seq。(詳細參考圖7A)
參與測試患者12人: dose1(3人);dose2(9人)
臨床反應: dose1隊列的3例患者表現(xiàn)為部分緩解(PR);dose2隊列的4例患者表現(xiàn)為部分緩解(PR);2例患者病情穩(wěn)定(SD);3例患者表現(xiàn)為階段性進展(PD);以上均未發(fā)現(xiàn)劑量毒性(圖7B)

4.1 Nous209聯(lián)合治療獲得持久的新表位特異性T細胞應答

- 疫苗免疫原性陽性率測試: dose1隊列的陽性率為67%,dose2隊列陽性率100%(圖7C),相對基線接種前免疫原性顯著提高(圖7D)

圖7. Nous-209疫苗接種在dMMR腫瘤患者中引起強烈而廣泛的新抗原特異性T細胞反應;圖A. 12例疫苗接種患者的臨床事件時間軸(治療包括PD-1聯(lián)合GAd或MVA疫苗);圖B. 通過RECIST v1.1的腫瘤成像來評估的臨床反應:白色的圓圈表示第一次反應時間,右側(cè)箭頭表示正在繼續(xù)進行研究治療(PR-部分緩解,SD-疾病穩(wěn)定,PD-疾病進展);圖C-D. 通過體外檢測IFN-γ衡量患者的免疫反應(16個覆蓋整個疫苗序列的重疊肽池)

- 免疫原性廣度分析:Pt3和Pt6分別為兩種劑量隊列的成員,患者對不同肽的免疫反應如圖7E,F,能夠看到疫苗誘導產(chǎn)生大量IFN-γ+ FSP-specific CD8+ T cells(圖7G)

圖7. Nous-209疫苗接種在dMMR腫瘤患者中引起強烈而廣泛的新抗原特異性T細胞反應;圖E-G. 免疫反應的廣度:(E)16種肽的陽性比例餅圖,(F)細胞內(nèi)染色(ICS)后,通過流式細胞術(shù)檢測各肽與PBMC結(jié)合量,(G) IFN-γ+ FSP-specific CD8+ T細胞定量
4.2 Nous-209疫苗誘導dMMR腫瘤患者新抗原特異性TCR克隆型擴大和多樣化(RNA-seq)

采集穿刺樣本的3位患者(Pt1, Pt11, Pt12)均為臨床表現(xiàn)為PR患者,在Nous-209治療后,TCR-β拷貝數(shù)增加,突出了克隆型的擴增和多樣化(圖8A),效應記憶T細胞的RNA相對豐度增加(圖8B)。
驗證疫苗誘導的CD8+ T細胞遷移性(外周血-->腫瘤),選擇Pt1分析(其中引起該患者免疫應答的“突變肽”名為F24,在患者基線期和治療期獲得的腫瘤穿刺樣本都有檢測到對應突變)

  • 疫苗接種后的患者外周血經(jīng)IVS試驗可以誘導特異性T細胞擴增:疫苗接種后Pt1血液中F24特異性CD8+T細胞比例增加(圖8D左),外周血經(jīng)過體外刺激(IVS)后,能夠看到F24特異性CD8+T細胞顯著擴增(圖8D右)
  • 外周血新表位特異性CD8+T細胞能夠成功運輸?shù)侥[瘤部位:在疫苗治療后的腫瘤活檢樣本中檢測到7個F24特異性CD8+T細胞克隆型與IVS試驗(圖8D右)相同的克隆型(圖8E,F)
    圖8. Nous-209疫苗接種后,TCR新抗原特異性T細胞克隆庫得到擴大和多樣化;圖A. 3例有臨床反應(PR)患者治療前后腫瘤活檢樣本的TCR-β庫的多樣性比較:橫軸表示TCR clone種類數(shù),縱軸表示每種TCR的拷貝數(shù);圖B. RNA-seq數(shù)據(jù)中效應記憶T細胞mRNA比例;圖C. 對患者1(pt1)的研究,患者現(xiàn)狀為臨床IV期-微衛(wèi)星不穩(wěn)定性高-結(jié)直腸癌-2L in PR,分別在第一次使用PD-1單抗前和治療第八周(56天)取活檢樣本;圖D. Pt1患者的T細胞反應測定:主要測定特異性肽F24,DNSO和CEFX分別為陰性對照和陽性對照,Ex vivo為PBMC無肽孵育的對照組,IVS為PBMC與F24孵育處理組;
圖8. Nous-209疫苗接種后,TCR新抗原特異性T細胞克隆庫得到擴大和多樣化;圖E. F24肽刺激疫苗注射前后PBMC的TCR-β克隆擴增柱狀圖;圖F. 腫瘤活檢組織的TCR-β克隆擴增柱狀圖:Baseline biopsy表示治療前;圖G. 治療前后的腫瘤活檢樣本的TCR-β庫的擴展和多樣化分析
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