2020-12-07 液體活檢丨血漿ctDNA檢測(cè)方法大比拼:ARMS-PCR vs MassARRAY

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基因talks [e藥安全](javascript:void(0);) 9月28日

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ctDNA(circulating tumor DNA) 是腫瘤細(xì)胞釋放到血液循環(huán)系統(tǒng)中的 DNA,是循環(huán)游離 DNA(circulating free DNA,cfDNA)或細(xì)胞游離DNA(cell free DNA,cfDNA)的一部分。ctDNA檢測(cè)(液體活檢)相對(duì)于常規(guī)傳統(tǒng)侵入式實(shí)體組織活檢具有非侵入性,患者依從性好,異質(zhì)性低,可反復(fù)取材等優(yōu)勢(shì)。

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▲ 液體活檢 vs 組織活檢

臨床上,由于ctDNA的半衰期短、濃度及含量低等原因,所以ctDNA檢測(cè)需要高靈敏度的技術(shù)。目前,實(shí)驗(yàn)室常見的ctDNA檢測(cè)技術(shù)有:

? 擴(kuò)增阻滯突變系統(tǒng)PCR(ARMS-PCR);

? 核酸質(zhì)譜(MassARRAY);

? 液滴數(shù)字PCR(ddPCR);

? 二代測(cè)序(NGS)等。1

*(文末有彩蛋)

2019年6月10日發(fā)表于癌癥雜志上的一篇研究,對(duì)比了分析了肺腺癌患者血漿ctDNA的兩種EGFR檢測(cè)方法:ARMS-PCR vs SABER/MassARRAY (Cancers (Basel), 2019, 11(6): 803. IF=6.162)。結(jié)果顯示:

? ARMS-PCR vs SABER/MassARRAY檢測(cè)血漿ctDNA中EGFR突變的總體靈敏度和特異性分別為:49.1% vs 56%,90% vs 95%。兩種方法之間的一致性水平非常高,kappa值為 0.88(95%CI 0.77-0.99)。

? 一線EGFR-TKI治療后血漿ctDNA中EGFR突變的存在與預(yù)后不良有關(guān)(PFS:9.0個(gè)月 vs 15.0個(gè)月;OS:30.6個(gè)月 vs 55.6個(gè)月),可見ctDNA適合作為腫瘤實(shí)時(shí)療效監(jiān)測(cè)及腫瘤進(jìn)展及不良預(yù)后早期預(yù)警指標(biāo)。2

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▲ 肺腺癌患者血漿ctDNA兩種EGFR檢測(cè)方法對(duì)比(IF=6.162

1關(guān)鍵詞基礎(chǔ)介紹

? EGFR與肺癌診療的關(guān)系:表皮生長因子受體(EGFR)通路在各種實(shí)體瘤(包括NSCLC)的生長,增殖和存活中起重要作用,因此,EGFR是肺癌治療的重要潛在靶標(biāo)。

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? ARMS-PCR:擴(kuò)增阻滯突變系統(tǒng)PCR (Amplification Refractory Mutation System PCR,ARMS-PCR),又稱為等位基因特異性PCR(Allele-Specific PCR,AS-PCR)。

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? SABER/MassARRAY:****單等位****基因堿基延伸反應(yīng)結(jié)合質(zhì)譜分析(single allele base extension reaction combined with mass spectroscopy,SABER/MassARRAY)。

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2研究流程及結(jié)果

? 研究流程:在本前瞻性研究中,研究者們使用肺腺癌患者的組織樣本確定EGFR突變狀態(tài),并比較了ARMS和SABER/MassARRAY方法檢測(cè)從這些患者血漿中分離的ctDNA中EGFR突變的效率。同時(shí),還評(píng)估了接受一線EGFR-TKI治療的肺腺癌患者的EGFR狀態(tài)與臨床結(jié)果之間的關(guān)系。

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▲ 研究流程圖

? 研究樣本數(shù):2013年2月~2017年3月,77名肺腺癌患者(57名患者和20名沒有EGFR突變者)。

? EGFR檢測(cè)內(nèi)容:包括19del、L858R及T790M等。

? ARMS檢測(cè)試劑:therascreen EGFR RGQ PCR kit (Qiagen, Hilden, Germany) ,可以檢測(cè)組織和血漿ctDNA。該試劑盒已在美國以及歐洲和亞洲國家獲得批準(zhǔn),用于高靈敏度和特異性的檢測(cè)肺癌組織/血漿ctDNA中的EGFR突變。3

? MassARRAY檢測(cè)試劑:OncoFOCUS? Panel v1.0(Agena Bioscience,San Diego,SABER / MassARRAY)。MassARRAY系統(tǒng)是基于基質(zhì)輔助激光解吸電離飛行時(shí)間(MALDI-TOF)的中通量多重超靈敏突變檢測(cè)系統(tǒng),可檢測(cè)實(shí)體瘤患者血漿ctDNA突變。4

? 組織DNA抽提:使用QIAamp DNA FFPE Tissue Kit(Qiagen)試劑盒從5um厚的FFPET中提取DNA。

? 血漿ctDNA抽提****:使用QIAamp Circulating Nucleic Acid Kit(Qiagen)試劑盒從EDTA管采集的1ml血漿中提取ctDNA。

? 研究結(jié)果:

首先使用ARMS方法確定77名肺腺癌患者組織樣本EGFR突變狀態(tài):57名患者EGFR突變,20名患者EGFR野生型。然后,使用ARMS和SABER/MassARRAY方法分別檢測(cè)從77和70名患者血漿中分離的ctDNA中EGFR突變狀態(tài),并評(píng)估接受一線EGFR-TKI治療的肺腺癌患者的EGFR狀態(tài)與臨床結(jié)果之間的關(guān)系。

EGFR的檢測(cè):以肺腺癌患者組織樣本的EGFR突變狀態(tài)為標(biāo)準(zhǔn),ARMS和SABER/MassARRAY檢測(cè)血漿ctDNA中EGFR突變的總體靈敏度、特異性及陽性預(yù)測(cè)值(PPV)分別為:49.1% vs 56%,90%vs 95%,93.3% vs 96.6%。

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▲ 兩種方法檢測(cè)EGFR對(duì)比

②** 19del的檢測(cè):ARMS和SABER/MassARRAY檢測(cè)血漿ctDNA中EGFR 19del突變的總體靈敏度、特異性及陽性預(yù)測(cè)值(PPV)分別為:50% vs 53.8%,95.6% vs 97.7%,88.9% vs 93.3%。**

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▲ 兩種方法檢測(cè)EGFR 19del對(duì)比

③** L858R的檢測(cè):ARMS和SABER/MassARRAY檢測(cè)血漿ctDNA中EGFR L858R突變的總體靈敏度、特異性及陽性預(yù)測(cè)值(PPV)分別為:45% vs 47.4%,100% vs 100%,100% vs 100%。**

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▲ 兩種方法檢測(cè)EGFR L858R對(duì)比

T790M的檢測(cè):在一名患者的血漿ctDNA中檢測(cè)到與EGFR-TKI耐藥相關(guān)的T790M突變,而在EGFR-TKI治療失敗的5名患者的再活檢樣本中也檢測(cè)到T790M突變。ARMS和SABER/MassARRAY檢測(cè)血漿ctDNA中EGFR T790M突變的總體靈敏度、特異性及陽性預(yù)測(cè)值(PPV)分別為:33.3% vs 50%,100% vs 100%,100% vs 100%。

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▲ 兩種方法檢測(cè)EGFR T790M對(duì)比

EGFR突變與預(yù)后關(guān)系:參加研究的77名患者中,43例組織檢測(cè)到常見EGFR激活突變(L858R和19del)并接受一線EGFR-TKI治療,在這43例患者中,血漿ctDNA 中EGFR突變的存在與預(yù)后不良有關(guān)(PFS:9.0個(gè)月 vs 15.0個(gè)月;OS:30.6個(gè)月 vs 55.6個(gè)月****),可見ctDNA適合作為實(shí)時(shí)療效監(jiān)測(cè)及腫瘤進(jìn)展及不良預(yù)后早期預(yù)警指標(biāo)。

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▲ EGFR-TKI治療后,血漿EGFR突變存在與預(yù)后PFS及OS有關(guān)

43例患者中,在預(yù)后評(píng)估方面,34例ARMS患者和30例SABER/MassARRAY患者在檢測(cè)血漿ctDNA EGFR突變時(shí),使用胸部 CT 檢測(cè)腫瘤的大小,發(fā)現(xiàn)EGFR-TKI治療后血漿EGFR突變存在的患者腫瘤較EGFR野生型的患者腫瘤更大。

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▲ EGFR-TKI治療后血漿EGFR突變存在的患者腫瘤更大

3研究討論及結(jié)論

討論:

① 本次研究的 ARMS 靈敏度(49.1%)較先前報(bào)道的略低(43.1~85.7%)5,6,7,可能原因是研究設(shè)計(jì)的問題:血液樣本是在EGFR-TKI治療后采集的。事實(shí)上,之前的一項(xiàng)研究報(bào)道,化療或EGFR-TKI治療后,肺癌患者血漿ctDNA 中EGFR突變的檢出率較低。8

SABRE/MassARRAY是檢測(cè)EGFR 19del 和 L858R 突變可靠且靈敏的方法。SABER/MassARRAY的靈敏度略高于ARMS(56% vs 49.1%),其中19del的靈敏度(53.8% vs 50%),L858R的靈敏度(47.4% vs 45%),T790M的靈敏度(50% vs 33.3%)均略高于ARMS,可能與其ctDNA突變檢測(cè)下限有關(guān)(SABRE/MassARRAY為0.1%,ARMS為1%)9 (需要注意的是:Agena官方顯示本研究中使用的 MassARRAY OncoFOCUS? Panel v1.0 是較早的panel,是用 iPLEX Pro 試劑做的,官方靈敏度為 5%;組織 iPLEX HS 是 1%靈敏度,血液 UltraSEEK 是 0.1%靈敏度。所以實(shí)際對(duì)比的應(yīng)該是 5%靈敏度的MassARRAY vs 1%靈敏度的ARMS)

結(jié)論:

此項(xiàng)研究表明,使用ARMS或SABER/MassARRAY方法檢測(cè)血漿ctDNA中EGFR突變是有前景,微創(chuàng)和可靠的,是腫瘤組織活檢替代方法。此外,研究數(shù)據(jù)表明,作為治療隨訪的一部分,監(jiān)測(cè)血漿ctDNA中EGFR突變狀態(tài)可用作攜帶常見EGFR激活突變和接受一線EGFR-TKI治療的肺腺癌患者的預(yù)后標(biāo)志物。

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前面我們說了,目前,實(shí)驗(yàn)室常見的ctDNA檢測(cè)技術(shù)有:

? 擴(kuò)增阻滯突變系統(tǒng)PCR(ARMS-PCR);

? 核酸質(zhì)譜(MassARRAY);

? 液滴數(shù)字PCR(ddPCR);

? 二代測(cè)序(NGS)等。

那么,這四種ctDNA檢測(cè)技術(shù)平臺(tái),有什么區(qū)別呢?下面我們從產(chǎn)品供應(yīng)商,技術(shù),突變報(bào)道情況,靈敏度,檢測(cè)周期,優(yōu)勢(shì)和缺點(diǎn)角度看看。

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MassARRAY UltraSEEKTM

聽說,MassARRAY推出了新的液體活檢技術(shù):****UltraSEEKTM,靈敏度≥0.1%,一起來了解下:

① MassARRAY系統(tǒng)是基于基質(zhì)輔助激光解吸電離飛行時(shí)間(MALDI-TOF)的中通量多重超靈敏突變檢測(cè)系統(tǒng)。MALDI-TOF質(zhì)譜檢測(cè)原理:

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② MassARRAY系統(tǒng)有自動(dòng)化和半自動(dòng)化工作流程:

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③ MassARRAY UltraSEEKTM 檢測(cè)原理:Agena核酸質(zhì)譜技術(shù),不需要在檢測(cè)覆蓋度與靈敏度之間進(jìn)行平衡,在UltraSEEK試劑的幫助下可實(shí)現(xiàn)低至0.1%的最小等位基因頻率(MAF)的檢測(cè)。為了獲得高靈敏度,UltraSEEK利用的是多重PCR,并結(jié)合后續(xù)的突變特異性單堿基延伸和帶有鏈霉親和素標(biāo)記的磁珠進(jìn)行捕獲,內(nèi)置的對(duì)照可用于驗(yàn)證反應(yīng)中是否存在DNA模板。

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參考資料:

1.《液體活檢在臨床腫瘤診療應(yīng)用和醫(yī)學(xué)檢驗(yàn)實(shí)踐中的專家共識(shí) 》

2.Hung M S, Lung Jr H, Lin Y C, et al. Comparative Analysis of Two Methods for the Detection of EGFR Mutations in Plasma Circulating Tumor DNA from Lung Adenocarcinoma Patients[J]. Cancers, 2019, 11(6): 803.

3.Vallee, A.; Le Loupp, A.G.; Denis, M.G. Efficiency of the Therascreen(R) RGQ PCR kit for the detection of EGFR mutations in non-small cell lung carcinomas. Clin. Chim. Acta. 2014, 429, 8–11.

4.Mehrotra, M.; Singh, R.R.; Loghavi, S.; Duose, D.Y.; Barkoh, B.A.; Behrens, C.; Patel, K.P.; Routbort, M.J.; Kopetz, S.; Broaddus, R.R.; et al. Detection of somatic mutations in cell-free DNA in plasma and correlation with overall survival in patients with solid tumors. Oncotarget 2018, 9, 10259–10271.

5.Kimura, H.; Suminoe, M.; Kasahara, K.; Sone, T.; Araya, T.; Tamori, S.; Koizumi, F.; Nishio, K.; Miyamoto,K.; Fujimura, M.; et al. Evaluation of epidermal growth factor receptor mutation status in serum DNA as a predictor of response to gefitinib (IRESSA). Br. J. Cancer. 2007, 97, 778–784.

6.Wang, S.; Han, X.; Hu, X.; Wang, X.; Zhao, L.; Tang, L.; Feng, Y.; Wu, D.; Sun, Y.; Shi, Y. Clinical significance of pretreatment plasma biomarkers in advanced non-small cell lung cancer patients. Clin. Chim. Acta. 2014, 430, 63–70.

7.Liu, X.; Lu, Y.; Zhu, G.; Lei, Y.; Zheng, L.; Qin, H.; Tang, C.; Ellison, G.; McCormack, R.; Ji, Q. The diagnostic accuracy of pleural effusion and plasma samples versus tumour tissue for detection of EGFR mutation in patients with advanced non-small cell lung cancer: Comparison of methodologies. J. Clin. Pathol. 2013, 66, 1065–1069.

8.Zhang, C.; Wei, B.; Li, P.; Yang, K.; Wang, Z.; Ma, J.; Guo, Y. Prognostic value of plasma EGFR ctDNA in NSCLC patients treated with EGFR-TKIs. PloS ONE 2017, 12, e0173524.

9.Ellison, G.; Donald, E.; McWalter, G.; Knight, L.; Fletcher, L.; Sherwood, J.; Cantarini, M.; Orr, M.; Speake,G. A comparison of ARMS and DNA sequencing for mutation analysis in clinical biopsy samples. J. Exp.Clin. Cancer Res. 2010, 29, 132.

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