Bioconductor:DESeq2

摘要

測序產(chǎn)生的數(shù)據(jù)內(nèi)容為,每個(gè)樣本中,每個(gè)基因分配到多少個(gè)測序片段,各種類型的測序(RNA-seq,CHIP-Seq,HiC)產(chǎn)生的數(shù)據(jù)類似。RNA-seq數(shù)據(jù)分析的一個(gè)基本任務(wù)就是檢測差異性表達(dá)的基因。其中一個(gè)重要的問題就是對不同條件下產(chǎn)生的系統(tǒng)學(xué)差異進(jìn)行量化和統(tǒng)計(jì)學(xué)推斷。DESeq2使用負(fù)二項(xiàng)式廣義線性模型來檢測基因表達(dá)的差異性,對分散和LFC的估計(jì)包含數(shù)據(jù)的先驗(yàn)分布。這篇短文介紹了包的使用和工作流程。

1 標(biāo)準(zhǔn)流程

簡單例子

dds <- DESeqDataSetFromMatrix(countData = cts,
                              colData = coldata,
                              design= ~ batch + condition)
dds <- DESeq(dds)
resultsNames(dds)
res <- results(dds, name="condition_trt_vs_untrt")
res <- lfcShrink(dds, coef="condition_trt_vs_untrt", type="apeglm")

已有基因表達(dá)矩陣,通過給定樣本信息,因子公式設(shè)計(jì)來進(jìn)行差異分析,最后可生成普通差異分析結(jié)果和收縮后的差異分析結(jié)果,詳細(xì)的后續(xù)。

如何獲取幫助

Bioconductor

導(dǎo)入的數(shù)據(jù)

  1. 使用未標(biāo)準(zhǔn)化的數(shù)據(jù)
    DESeq2內(nèi)部會根據(jù)樣本大小對counts進(jìn)行調(diào)整,自帶標(biāo)準(zhǔn)化過程。
  2. DESeqDataSet
    其在DESeq2中是一種類型,在代碼中常用dds來表示,其實(shí)例對象用來存儲counts和中間估計(jì)量。中間估計(jì)量中就包括跨基因收集的信息。這個(gè)對象必須包含design formula,用來構(gòu)建模型的變量(分組信息)。這個(gè)對象可以通過四種上游途徑來構(gòu)建:轉(zhuǎn)錄豐度文件;counts矩陣;htseq-count文件;SummarizedExperiment對象。這里只記錄counts矩陣方法。
  3. count 矩陣導(dǎo)入
    代碼
#使用pasilla包中附帶的數(shù)據(jù)
library("pasilla")
#讀入表達(dá)矩陣,樣本注釋
pasCts <- system.file("extdata",
                      "pasilla_gene_counts.tsv",
                      package="pasilla", mustWork=TRUE)
pasAnno <- system.file("extdata",
                       "pasilla_sample_annotation.csv",
                      package="pasilla", mustWork=TRUE)
cts <- as.matrix(read.csv(pasCts,sep="\t",row.names="gene_id"))
coldata <- read.csv(pasAnno, row.names=1)
coldata <- coldata[,c("condition","type")]

#樣本注釋修改,排序
rownames(coldata) <- sub("fb", "", rownames(coldata))
cts <- cts[, rownames(coldata)]

#加載DESeq2包,構(gòu)建dds對象
library("DESeq2")
dds <- DESeqDataSetFromMatrix(countData = cts,
                              colData = coldata,
                              design = ~ condition)

#為結(jié)果附加描述信息
featureData <- data.frame(gene=rownames(cts))
mcols(dds) <- DataFrame(mcols(dds), featureData)

  • counts數(shù)值為整數(shù)
  • 列名順序和colData樣本信息順序要一致
  • 附加信息操作一般用不上
  1. 前過濾
    代碼
keep <- rowSums(counts(dds)) >= 10
dds <- dds[keep,]


并不是必須,不影響計(jì)算結(jié)果,這樣做的優(yōu)點(diǎn)是dds對象占用的內(nèi)存小點(diǎn),后續(xù)的計(jì)算耗時(shí)小點(diǎn)。

  1. 標(biāo)注因子水平
    代碼:
dds$condition <- factor(dds$condition, levels = c("untreated","treated"))
dds$condition <- relevel(dds$condition, ref = "untreated")
dds$condition <- droplevels(dds$condition)

注:

  • 在進(jìn)行后續(xù)操作前指定,如果沒有指定,采用的是默認(rèn)
  • levels對應(yīng)的分別為,分母,分子
  • ref為指定的對照組,即分母
  • 當(dāng)公式中的某個(gè)變量對應(yīng)的樣本沒有的時(shí)候,可以通過dropleveles移除
  1. 折疊重復(fù)
    DESeq2提供collapseReplicates函數(shù)進(jìn)行去重復(fù)(非生物平行),詳見手冊。

差異性分析

代碼

dds <- DESeq(dds)
res <- results(dds)
res <- results(dds, contrast=c("condition","treated","untreated"))

差異性分析的計(jì)算和估計(jì)過程整合到了一個(gè)函數(shù)DESeq中,其中的具體細(xì)節(jié)步驟后續(xù)會有介紹。對DESeq分析產(chǎn)生的結(jié)果,通過results函數(shù)生成結(jié)果表。

  • 可以通過contrast參數(shù)設(shè)置生成結(jié)果表的特定因子
  1. LFC收縮
    代碼
resultsNames(dds)
resLFC <- lfcShrink(dds, coef="condition_treated_vs_untreated", type="apeglm")

就是將DESeq函數(shù)處理后生成的的dds對象傳遞給lfcShrink函數(shù)即可,參數(shù)后續(xù)。

  1. 任務(wù)并行
    代碼
library("BiocParallel")
register(MulticoreParam(4))

就是利用一個(gè)包,開啟多線程。

  1. p值和矯正p值
    代碼
resOrdered <- res[order(res$pvalue),]
summary(res)
sum(res$padj < 0.1, na.rm=TRUE)
res05 <- results(dds, alpha=0.05)
sum(res05$padj < 0.05, na.rm=TRUE)

可以利用p值和矯正p值集合一些簡單總結(jié)函數(shù),來得到想要的初步結(jié)果。

  1. 獨(dú)立假設(shè)權(quán)重
    DESeq2中p值的矯正使用的是IHW包,具體原理見對應(yīng)文獻(xiàn)及文檔。
    代碼
library("IHW")
resIHW <- results(dds, filterFun=ihw)
summary(resIHW)
sum(resIHW$padj < 0.1, na.rm=TRUE)
metadata(resIHW)$ihwResult

探索并導(dǎo)出結(jié)果

  1. MA-plot
    代碼
plotMA(res, ylim=c(-2,2))
plotMA(resLFC, ylim=c(-2,2))

效果好的話,收縮的圖形不會出現(xiàn)左寬右窄。

  1. 多種收縮方法
#查看你coef的順序序號
resultsNames(dds)
#通過序號代替全稱;三種收縮方法
resNorm <- lfcShrink(dds, coef=2, type="normal")
resAsh <- lfcShrink(dds, coef=2, type="ashr")
resApe <- lfcShrink(dds, coef=2, type="apeglm")

目前DESeq2提供了三種可選的方法,不同LFC擬合的分布來進(jìn)行后續(xù)的收縮操作,具體細(xì)節(jié)參考對應(yīng)方法的具體文檔。

  1. counts繪圖
    代碼
plotCounts(dds, gene=which.min(res$padj), intgroup="condition")

繪制特定基因的counts圖,可以通過設(shè)置return=T,來返回一個(gè)用于ggplot可以進(jìn)一步設(shè)置具體參數(shù)的data.frame對象。

  1. 結(jié)果的更多信息
    代碼
mcols(res)$description

可以通過mcol函數(shù)來查看結(jié)果表中各個(gè)變量的含義。其中變量LFC就是變化的倍數(shù),存在NA的可能原因有:

  • 一個(gè)基因在所有樣本中的表達(dá)值都為0
  • 一個(gè)基因的某個(gè)樣本的表達(dá)值為離群值(通過Cook距離檢測)
  • 一個(gè)基因counts標(biāo)準(zhǔn)化后數(shù)值過低
  1. 結(jié)果的導(dǎo)出和豐富的可視化
    ReportingTools,regionReport,Glimma,pcaExplorer等工具可以生成一個(gè)報(bào)表形式的結(jié)果。
  2. 導(dǎo)出結(jié)果到csv文件
    利用R基礎(chǔ)的write.csv就可以

多因素設(shè)計(jì)

用的時(shí)候再說

2 數(shù)據(jù)轉(zhuǎn)換及可視化

  1. count數(shù)據(jù)的轉(zhuǎn)換
  2. 數(shù)據(jù)質(zhì)量的檢測

3 流程中的可變步驟

4 DESeq2理論基礎(chǔ)

5 常見問題

參考資料
Michael I. Love, Simon Anders, and Wolfgang Huber.2018."Analyzing RNA-seq data with DESeq2".http://www.bioconductor.org/packages/release/bioc/vignettes/DESeq2/inst/doc/DESeq2.html

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