電轉(zhuǎn)染應(yīng)用:從外泌體的巨胞飲途徑到細(xì)胞內(nèi)給藥系統(tǒng)

胞外囊泡

胞外囊泡(Extracellular vesicles,EV)如外泌體,是一類直徑在30-200nm之間,具有磷脂雙分子層的細(xì)胞分泌小泡。大多數(shù)細(xì)胞都可分泌EV。由于攜帶遺傳物質(zhì)(如microRNA)和種類豐富的酶,EV通??蓞⑴c細(xì)胞通信中免疫反應(yīng)的調(diào)節(jié),從而實(shí)現(xiàn)生物體的細(xì)胞調(diào)節(jié)作用。因其自身屬性,包括:①參與細(xì)胞間通訊途徑,②無細(xì)胞毒性,③可控免疫原性,④組成性分泌,⑤額外生物功能分子的包囊,⑥功能蛋白在膜中的表達(dá)等,EV還具有細(xì)胞內(nèi)給藥優(yōu)勢(shì)而備受期待,有望成為下一代細(xì)胞治療的生物載體。

當(dāng)大量的EV被分泌到體液中時(shí)(血液中外泌體的含量約為3×10^6個(gè)/μL),這常會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞對(duì)EV的攝取競(jìng)爭(zhēng),除此之外,EV膜的負(fù)電荷也會(huì)拮抗它們?cè)趲ж?fù)電的細(xì)胞膜上積聚。因此,為了實(shí)現(xiàn)有效的EV內(nèi)容物的細(xì)胞內(nèi)遞送,特別是在胞質(zhì)溶膠中,還需要一種完善的方法來提高EV的細(xì)胞攝取效率。

據(jù)報(bào)導(dǎo),癌癥相關(guān)受體(如表皮生長(zhǎng)因子受體)的表達(dá)可誘導(dǎo)細(xì)胞的巨胞飲作用(伴有肌動(dòng)蛋白重組、質(zhì)膜皺折和大量細(xì)胞外液吞噬)并顯著提高EV的細(xì)胞攝取效率。功能性活化修飾的EV本身誘導(dǎo)的巨胞飲作用對(duì)于基于EV的治療分子的細(xì)胞內(nèi)傳遞,已被強(qiáng)有力地證明是行之有效的。

近期,日本學(xué)者Ikuhiko Nakase及其研究團(tuán)隊(duì)利用八聚精氨酸肽修飾EV,卓有成效地誘導(dǎo)了細(xì)胞巨胞飲作用和其對(duì)EV的攝取作用。他們證實(shí),這是一種具有代表性的富含精氨酸的細(xì)胞穿透肽(CPP),可被細(xì)胞有效內(nèi)化。

然而,寡精氨酸肽序列中精氨酸殘基的數(shù)量會(huì)影響其細(xì)胞攝取和細(xì)胞溶質(zhì)的釋放效率。在該研究中,該團(tuán)隊(duì)使用具有不同數(shù)量精氨酸殘基的寡精氨酸肽序列修飾EV膜,并探究了其如何影響巨胞飲作用的誘導(dǎo)、細(xì)胞EV攝取和EV內(nèi)容物的胞漿釋放。

每個(gè)寡精氨酸肽具有不同數(shù)量的精氨酸殘基(Rn:n=4,8,12,16),Rn-EMC(n-ε-馬來酰氨基丙氧基丁二酰亞胺酯)是一種胺-巰基交聯(lián)劑,寡精氨酸肽通過與Rn-EMC混合,可實(shí)現(xiàn)對(duì)EV膜的修飾。

如圖1所示(略)

這是寡精氨酸肽修飾EV的細(xì)胞攝取示意圖。通過磺基EMCS連接物,EV可與寡精氨酸肽偶聯(lián)。

如圖2所示(略)

這是在37°C下,在10%含血清的細(xì)胞培養(yǎng)基中培養(yǎng)24小時(shí),Rn-EMCS修飾的CD63 GFP EV(20μg/mL)在CHO-K1細(xì)胞中的相對(duì)細(xì)胞攝取效率的流式細(xì)胞術(shù)分析圖,該研究團(tuán)隊(duì)發(fā)現(xiàn)。寡精氨酸肽在EV膜上的結(jié)合顯著增強(qiáng)了細(xì)胞對(duì)EV的攝取。而共軛寡精氨酸肽中的精氨酸儲(chǔ)備數(shù)量更是直接影響細(xì)胞攝取效率。R8-EMCS或R12-EMCS的結(jié)合是所有寡精氨酸肽結(jié)合物中EV細(xì)胞攝取效率最高的。由于R8-或R12-EMCS的修飾,細(xì)胞EV攝取量高出29倍。

如圖3所示

這是在相同實(shí)驗(yàn)條件下,用Rn-EMC(n=8:20μM,n=16:10μM)修飾的FITC葡聚糖膠囊EVs(20μg/mL)處理CHO-K1細(xì)胞的共聚焦顯微鏡觀察結(jié)果。該團(tuán)隊(duì)發(fā)現(xiàn),木糖基轉(zhuǎn)移酶是啟動(dòng)糖胺聚糖(GAG)合成所必需的酶,并且不產(chǎn)生可檢測(cè)水平的蛋白多糖,在質(zhì)膜上表達(dá)的蛋白多糖對(duì)細(xì)胞有效攝取寡精氨酸肽起著關(guān)鍵作用。

為了研究基于EV和細(xì)胞溶質(zhì)釋放的生物活性蛋白的遞送,該研究團(tuán)隊(duì)通過電轉(zhuǎn)染技術(shù)將核糖體失活蛋白saporin包囊在EV中,實(shí)驗(yàn)結(jié)果發(fā)現(xiàn)最初封裝在EV中的saporin的細(xì)胞攝取和胞漿釋放增強(qiáng)是通過用R16-EMCS修飾EV膜實(shí)現(xiàn)的。并且每個(gè)寡精氨酸肽在細(xì)胞內(nèi)呈現(xiàn)不同的胞漿釋放效率,可能是由于R16的內(nèi)質(zhì)體膜擾動(dòng)能力高于短寡精氨酸。

概而論之,該研究發(fā)現(xiàn)通過修飾EV膜上的寡精氨酸肽可有效誘導(dǎo)巨胞飲作用和細(xì)胞EV攝取。而使用帶有EMCS連接物的寡精氨酸肽修飾EV膜,是一種無細(xì)胞毒性和簡(jiǎn)單可行有效方法,可為基于EV載體的細(xì)胞內(nèi)給藥系統(tǒng)提供新的研究思路。

我們發(fā)現(xiàn),該研究團(tuán)隊(duì)在對(duì)EV進(jìn)行藥物加載的過程中,是通過電轉(zhuǎn)染的方法來完成的。而轉(zhuǎn)運(yùn)加載的效率對(duì)下游實(shí)驗(yàn)的影響也至關(guān)重要。為了實(shí)現(xiàn)有效的EV包囊封裝,研究者們選擇NEPA GENE NEPA21高效基因轉(zhuǎn)染系統(tǒng),并最終獲得了成功理想的實(shí)驗(yàn)結(jié)果。

NEPA21 采用獨(dú)特設(shè)計(jì)的電轉(zhuǎn)程序;電壓衰減(Voltage Decay)模式;基因?qū)?反向?qū)肽J?。不需特殊轉(zhuǎn)染試劑輔助,節(jié)省實(shí)驗(yàn)成本??蓱?yīng)用于對(duì)細(xì)胞、組織和動(dòng)物活體的轉(zhuǎn)染。電轉(zhuǎn)參數(shù)實(shí)時(shí)可見、可調(diào),適合對(duì)難轉(zhuǎn)染細(xì)胞的條件優(yōu)化。

參考資料:

1.Nakase, I., Noguchi, K., Fujii, I. & Futaki, S. Vectorization of biomacromolecules into cells using extracellular vesicles with enhanced internalization induced by macropinocytosis. Sci. Rep 6, 34937, doi:10.1038/srep34937 (2016).

2.Nakase, I. & Futaki, S. Combined treatment with a pH-sensitive fusogenic peptide and cationic lipids achieves enhanced cytosolic delivery of exosomes. Sci. Rep 5, 10112, doi:10.1038/srep10112 (2015).

3.Nakase, I., Kobayashi, N. B., Takatani-Nakase, T. & Yoshida, T. Active macropinocytosis induction by stimulation of epidermal growth factor receptor and oncogenic Ras expression potentiates cellular uptake efficacy of exosomes. Sci. Rep 5, 10300, doi:10.1038/ srep10300 (2015).?

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