細(xì)胞的支原體檢測——PCR 法

PCR 法是20 世紀(jì)80 年代中期建立起來的一種體外DNA 擴(kuò)增實(shí)驗(yàn),其基本原理是酶促DNA 合成反應(yīng),即在DNA

模板、引物和脫氧核糖核酸存在下,經(jīng)DNA 聚合酶的作用,使DNA

鏈擴(kuò)增延伸。該實(shí)驗(yàn)具有靈敏度高、特異性強(qiáng)、檢測快速的特點(diǎn),但其對實(shí)驗(yàn)環(huán)境要求嚴(yán)格, 實(shí)驗(yàn)成本較高, 有時(shí)還會出現(xiàn)假陽性的現(xiàn)象。

(一)材料與設(shè)備

支原體PCR 檢測試劑盒、dNTP 、TaqDNA 聚合酶、緩沖溶液、瓊脂糖、礦物油、超凈工作臺、PCR 儀、電泳儀、凝膠成像分析系統(tǒng)、臺式離心機(jī)、旋渦混旋器等。

(二)操作步驟

1 樣品的收集。待測細(xì)胞用無雙抗培養(yǎng)液培養(yǎng)7d,用無菌容器取上清液500μl ,4℃ 保存待測。

2 . 模板的制作。在無菌的條件下, 取細(xì)胞培養(yǎng)上清1 00μl 于一無菌的0.5ml塑料離心管內(nèi),蓋好蓋子, 95 ℃ 水浴加熱5min 。

3. 打開蓋子,向管內(nèi)加StrataClean Resin 10μl,蓋好蓋子,旋渦混懸器混合,離心5~ 10s, 吸取上清至一新的塑料離心管中,模板制作完畢, 4℃ 保存。

4. PCR 反應(yīng)。反應(yīng)體系的最適條件為10mmol/L Tris-HCI (pH 8.38), 50 mmol/L KCI, 1.5~ 2.5 mmol/L MgCl2,200 μmol/L dNTP, 2U Taq DNA 聚合酶,總反應(yīng)體系為50μl , 反應(yīng)用去離子水均需用紫外燈照射。

(1)在0.5ml 塑料離心管中加入35.2μl 去離子水及5μl 10 xTaq 反應(yīng)緩沖溶液。

(2)依次加入下列成分: 0.4μl dNTP (25mmol/L)、0.4μl Taq 酶(5U/μl ) 、2μl引物。

(3) 加2μl 去離子水, 總體積45μl 。

(4)加5μl 己制成的模板到反應(yīng)體系中。

(5) 陽性對照,內(nèi)對照各5μl 加入到各自的反應(yīng)體系中。

(6) 取1支含有以上反應(yīng)體系的離心管,加入5μl 去離子水作為陰性對照管。

(7) 在反應(yīng)體系中加入100μl 礦物油。

(8)PCR 程序見表1 。

表1

5.瓊脂糖凝膠電泳。PCR 反應(yīng)結(jié)束后,進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳,瓊脂糖凝膠濃度為2%。電泳結(jié)束后,凝膠成像分析結(jié)果。

6.結(jié)果分析。該方法為檢瀏支原體的定性方法,在電泳泳道上, Marker、陽性對照、內(nèi)對照均會出現(xiàn)不同的電泳條帶, 當(dāng)被檢樣品泳道出現(xiàn)明亮條帶,且位置在陽性對照和內(nèi)對照條帶位置之間,即可認(rèn)為該樣品被支原體污染 。

有時(shí)還會發(fā)現(xiàn)一條泳道出現(xiàn)多條,可能是該樣品感染2 種以上支原體所致。如果泳道內(nèi)條帶隱約出現(xiàn),則可懷疑有支原體污染,重做該樣品。

(三)注意事項(xiàng)

PCR 反應(yīng)的前期操作應(yīng)在無菌環(huán)境中進(jìn)行。

注意假陽性、假陰性,有時(shí)需多次重復(fù)。

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