@_Melody_le 可以,表頭其實(shí)儲(chǔ)存的就是你的基因組染色體信息以及比對(duì)的命令,對(duì)比對(duì)的實(shí)際內(nèi)容沒有影響。刪掉不需要的行之后記得仔細(xì)檢查一下就好,不要只保留了read1而把read2丟掉了。
bam文件截取指定長(zhǎng)度的序列截取長(zhǎng)度在50-100的序列 截取長(zhǎng)度為50,51的序列
@_Melody_le 可以,表頭其實(shí)儲(chǔ)存的就是你的基因組染色體信息以及比對(duì)的命令,對(duì)比對(duì)的實(shí)際內(nèi)容沒有影響。刪掉不需要的行之后記得仔細(xì)檢查一下就好,不要只保留了read1而把read2丟掉了。
bam文件截取指定長(zhǎng)度的序列截取長(zhǎng)度在50-100的序列 截取長(zhǎng)度為50,51的序列
@dessertle 會(huì)麻煩點(diǎn),可以按照插入片段來篩選。bam第九列是插入片段長(zhǎng)度,根據(jù)這個(gè)提取符合長(zhǎng)度的序列名字。然后根據(jù)序列名用seqtk提取bam文件。
bam文件截取指定長(zhǎng)度的序列截取長(zhǎng)度在50-100的序列 截取長(zhǎng)度為50,51的序列
n = "\n", 就是把換行符賦值給n的意思,其實(shí)可以用seqkit更方便的
將某一多行的fasta文件轉(zhuǎn)換為單行的fasta文件處理數(shù)據(jù)的時(shí)候經(jīng)常遇到將多行fasta轉(zhuǎn)換為單行,或者將很多行fasta串聯(lián)起來合并為一行,下面是一些方法。 1、將多行fasta轉(zhuǎn)換為單行的,并保留原來的頭 ps ...
比對(duì)軟件比如bowtie并不支持比對(duì)fasta格式的文件,所以需要把fasta轉(zhuǎn)為fastq格式,但是fasta和fastq相比缺少質(zhì)量值,所以只能偽造一個(gè)加上去,這里用到s...
參考自 https://www.biostars.org/p/64346/[https://www.biostars.org/p/64346/] 方法: 利用UCSC的bed...
1、鏈特異性測(cè)序的目的現(xiàn)在二代測(cè)序主要有PE和SE兩種策略,PE主要用于RNA-seq,SE主要用于小RNA測(cè)序(短片段文庫(kù)測(cè)序)。PE測(cè)序,我們可以得到read1和read...
謝謝,我沒注意這個(gè)參數(shù),不過我是單端的數(shù)據(jù)。
二代測(cè)序數(shù)據(jù)(RNA-seq)比對(duì)率低怎么辦在分析二代數(shù)據(jù)的時(shí)候,很常見的一個(gè)問題就是比對(duì)率低,下面是我就經(jīng)常遇到的一些情況,以及解決方法。 影響測(cè)序數(shù)據(jù)比對(duì)率的原因 1.接頭污染: 測(cè)序接頭: 最常見的污染源就是測(cè)序...
很多人會(huì)使用PGA進(jìn)行葉綠體基因組注釋,但是PGA產(chǎn)生的genbank文件不夠規(guī)范,對(duì)其進(jìn)行以下修改,能解決很多問題:
如果我想把列表當(dāng)作單獨(dú)的一個(gè)域進(jìn)行輸出,直接print是最簡(jiǎn)單的方法,但是,輸出時(shí)會(huì)有方括號(hào)[],用join()這個(gè)函數(shù)就可以刪除掉這個(gè)方括號(hào)了。
是的,單端測(cè)序用到這個(gè)比較多,雙端測(cè)序我目前沒用到過需要截取指定長(zhǎng)度的情況。
bam文件截取指定長(zhǎng)度的序列截取長(zhǎng)度在50-100的序列 截取長(zhǎng)度為50,51的序列
處理數(shù)據(jù)的時(shí)候經(jīng)常遇到將多行fasta轉(zhuǎn)換為單行,或者將很多行fasta串聯(lián)起來合并為一行,下面是一些方法。 1、將多行fasta轉(zhuǎn)換為單行的,并保留原來的頭 ps ...